Categories: РазноеAuthor alexxlabPosted on No comment on Медный купорос как разводить от плесени: Медный купорос 100г антисептик от плесени и гнили ❄ Препараты от болезней растений 110руб.

Медный купорос как разводить от плесени: Медный купорос 100г антисептик от плесени и гнили ❄ Препараты от болезней растений 110руб.

Содержание

как развести и использовать раствор медного купороса для обработки деревьев осенью и весной

Что такое железный купорос

Железный купорос(1) – так называют садоводы водный раствор сульфата железа или сернокислого железа (FeSO4). Неорганическое соединение используется для дезинфекции помещений, как удобрение и для защиты растений от болезней, мхов и лишайников.

Это кристаллическое вещество светло-зеленого или серо-зеленого цвета, хорошо растворимое в воде, без запаха и с низкой токсичностью для окружающей среды. Применяется как фунгицид преимущественно ранней весной и поздней осенью. Эффективное средство для лечения хлороза растений в летнее время.

Полезная информация о железном купоросе

Класс препаратаХимический контактный фунгицид
Действующее веществоСульфат железа FeSO4
Область примененияСельское хозяйство, ЛПХ
Токсичность для человека и животныхIII класс токсичности
Токсичность для пчелIII класс токсичности
Токсичность для растенийНизкая
ПривыканиеНизкое
Количество обработок за сезонОт 1 до 4
Период защитного действияДо 2 недель
Форма выпускаКристаллический порошок
Срок ожидания7 дней
Способы примененияОпрыскивание растений, внесение в почву, дезинфекция теплиц и погребов, обработка повреждений коры, побелка
Сфера действияГрибные болезни (парша, антракноз, пятнистости, монилиоз, ржавчина и др. ), мхи и лишайники, слизни и улитки (2)

Как развести железный купорос

Железный купорос выпускается в различной фасовке и с разной дозировкой действующего вещества. Все рекомендации даются для сульфата железа с дозировкой действующего вещества не менее 50%. При хранении во вскрытой упаковке железный купорос быстро окисляется и утрачивает фунгицидные функции.

Железный купорос легко растворяется в воде. Для работы с ним используют пластиковую либо стеклянную посуду. Сначала необходимое количество купороса растворяют в 1 л горячей воды (45 – 50 °С), затем доводят до объема 10 л холодной водой. Готовый раствор необходимо процедить и использовать в течение 2 – 3 часов.

Пропорции

Дозировка зависит от того, какие цели преследуются:

  • для предотвращения и лечения хлороза (внекорневые опрыскивания, до 4 раз за сезон) – 0,05 – 0,1%;
  • для профилактики и лечения грибных заболеваний (в летнее время) – 0,5 – 1%;
  • для обработки сада ранней весной от грибных инфекций, обработки ран и дупел – 1 – 1,5%;
  • для искореняющей обработки сада от грибных инфекций – 3 – 4,5%;
  • для уничтожения мхов и лишайников на семечковых деревьях – 5%;
  • для уничтожения мхов и лишайников на косточковых и ягодных кустарниках – 3%.

С мочевиной

Опытные садоводы практикуют осеннюю искореняющую обработку сада смесью железного купороса и мочевины, таким образом уничтожая большую часть спор грибных заболеваний и частично зимующих вредителей.

Такую обработку можно проводить после листопада, опрыскивая стволы, ветви и приствольные круги. Исключение составляют молодые саженцы во избежание ожогов коры.

Раствор готовят следующим образом: в 5 л дождевой или мягкой воды растворяют 300 – 500 г мочевины. В 1 л горячей воды (45 – 50°С) растворяют 200 – 400 г железного купороса, добавляют 1 л раствора 30 г лимонной кислоты. Смешивают растворы железного купороса и мочевины, добавляют 2 ст. ложки детского мыла и доводят общий объем до 10 л.

Обработка деревьев железным купоросом

Фото: Benjah-bmm27, upload.wikimedia.org

Опрыскивание деревьев раствором железного купороса защищает от грибных болезней, но не эффективно против вирусов и бактерий. Помимо опрыскивания железный купорос применяют для дезинфекции ран и дупел. Опрыскивание или обработка кистью раствором железного купороса эффективны в борьбе с мхами и лишайниками, заселившими стволы и ветки деревьев и кустарников(3).

Весна

Весной просыпаются не только растения, но и их враги: насекомые, клещи, слизни, споры грибов. Поэтому важная задача – защитить сад. При плюсовой температуре до появления зеленого конуса опрыскивают растения 1 – 1,5%-ным раствором железного купороса.

Во влажную теплую погоду с помощью широкой кисти обрабатывают зараженные мхами и лишайниками стволы и скелетные ветви яблонь и груш 5%-ным раствором железного купороса.

Осень

Многие садоводы и специалисты считают, что именно осенняя обработка сада раствором железного купороса наиболее эффективна. К тому же это практически единственное средство, которым можно опрыскивать растения при нулевой температуре.

Работы проводят после того, как деревья и кустарники сбросят листья. Желательно перед обработкой убрать весь сор в приствольных кругах, провести очистку коры от старых наслоений.

После осенней обработки проводят побелку стволов и защиту их от повреждений грызунами.

Сад

В саду железный купорос используется не только для защиты растений от грибных болезней, мхов и лишайников. Важную роль он играет как дезинфектор – 5%-м раствором обеззараживают деревянные конструкции теплиц, парников и контейнеров, подвалов и других мест хранения урожая.

Сильно пораженные грибком места обрабатывают кистью, смачивая в более концентрированном растворе – до 10%.

Также раствор железного купороса применяют для дезинфекции дачных туалетов.

Плодовые деревья

Плодовые деревья опрыскивают концентрированными растворами железного купороса строго до того, как лопнут почки или осенью после листопада, т.к. они могут вызывают ожоги листьев и цветов.

Однако в летнее время при признаках хлороза допустимо применение железного купороса как микроэлемента, если в наличии нет препаратов железа в хелатной форме.

При сильном заражении грибными болезнями опытные садоводы применяют 1%-ное опрыскивание косточковых культур после сбора урожая по больным листьям. Это вызывает осыпание листвы, которую необходимо убирать и уничтожать.

Виноград

Железный купорос применяют в виноградарстве, как эффективную защиту от грибных болезней, мхов и лишайников.

Первую обработку проводят 1%-ным раствором железного купороса сразу после раскрытия лозы до набухания почек. Одновременно этим раствором дезинфицируют грунт вокруг винограда и деревянные опоры. Более концентрированным раствором (до 7%) обрабатывают повреждения и трещины на коре.

Вторую обработку лозы проводят осенью после сброса листьев непосредственно перед укрытием лозы 3%-ным раствором железного купороса.

Розы

Высокая степень эффективности в профилактике и лечении роз достигается осенней обработкой 3 – 5%-ным раствором железного купороса. Проводят ее во второй половине октября и даже в начале ноября. Так как листопада у роз практически не бывает, а сохраненные листья зимой под укрытием создают проблемы, то именно обработка концентрированным раствором железного купороса дает двойной эффект – защиту от грибных болезней и осыпание листьев.

Одновременно с обработкой роз опрыскивают и деревянные опоры для плетистых сортов, а также поливают почву под растениями, чтобы уничтожить споры грибков и личинки вредителей. зимующих в почве. Только после этого почву мульчируют и готовят розы к укрытию на зиму.

Весеннее опрыскивание 1 – 1,5%-ным раствором железного купороса возможно только до момента набухания почек.

Отзывы агрономов о железном купоросе

– Хотя сульфат железа активно применяется дачникам, у него есть как плюсы, так и минусы, – говорит агроном Олег Исполатов.

К плюсам можно отнести:

  • широкий спектр применения – защита от болезней, вызванных грибами, и вредителей, мхов и лишайников, дезинфекция садовых инструментов, теплиц, погребов, деревянных конструкций;
  • высокая эффективность;
  • профилактика и лечение хлороза;
  • возможность использования при температурах от 0 °С;
  • низкая токсичность, как для человека, так и для окружающей среды;
  • низкая цена и высокая доступность.

Минусы железного купороса:

  • низкая эффективность против насекомых-вредителей и безвредность к вирусам и бактериям;
  • подкисление почвы;
  • строгое соблюдение концентрации раствора и времени его применения;
  • быстрое смывание осадками и окисление на воздухе в течение 10 – 14 дней.

Популярные вопросы и ответы

На типичные вопросы дачников о железном купоросе нам ответил агроном Олег Исполатов.

Можно ли использовать железный купорос от вредителей?

Железный купорос применяют в защите сада от слизней и улиток, используя его для приготовления отравляющих приманок. Один из рецептов такой: 400 г любой муки, 8 г железного купороса и 2 – 3 г сухих дрожжей хорошо перемешать, добавить немного пива или кефира, чтобы получилось тесто в виде мучной крошки. Заложить смесь в банки и разместить лежа в местах, где больше всего слизней или улиток.

В каких пропорциях нужно разводить железный купорос?

Концентрация раствора железного купороса зависит от того, в каких целях и в какой период вегетации применяется это средство. Внимательно читайте инструкцию и соблюдайте правила безопасности. Помните, что сульфат железа не совместим с щелочными материалами и быстро теряет свои фунгицидные свойства.

При какой температуре можно использовать железный купорос?

Опрыскивание сада раствором железного купороса возможно при температуре не ниже 0 °С.

Какой купорос лучше: железный или медный?

У этих видов купороса есть свои плюсы и минусы, но однозначно ответить, что лучше невозможно. Практика показывает, что большего эффекта можно достигнуть, если весной проводить обработку сада медным купоросом, а осеннюю – железным.

Источники

  1. Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации по состоянию на 6 июля 2021 г. // Министерство сельского хозяйства Российской Федерации https://mcx.gov.ru/ministry/departments/departament-rastenievodstva-mekhanizatsii-khimizatsii-i-zashchity-rasteniy/industry-information/info-gosudarstvennaya-usluga-po-gosudarstvennoy-registratsii-pestitsidov-i-agrokhimikatov/
  2. Валягина-Малютина Е. Защита сада и огорода от вредителей, болезней и сорняков. Популярная энциклопедия // СПб: Диля, 2013
  3. Трейвас Л.Ю. Защита сада и огорода // М.: Кладезь-Букс, 2007.

Медный купорос для обработки деревьев: как разводить, дозировка

Главная » Плесень

Автор Татьяна Саблина Просмотров 1.4к. Опубликовано Обновлено

Я опытный и потомственный дачник, но в преддверии нового сезона мне пришлось усомниться в том, что я действительно знаю правила, как развести медный купорос для обработки деревьев, чтобы добиться эффективного воздействия на развивающуюся плесень.

В прошлом году ветки всех видов культур в моём саду ломились от обилия плодов и ягод: крупная черная черешня, персики, яблоки, айва, груша, слива и абрикос удивляли небывалым плодородием. Вот только все-все они, кроме шелковицы, были непригодны к употреблению в свежем виде из-за поражения плесенью.

Рекомендуем прочитать — «Почему нельзя есть ягоды с плесенью«

Содержание

  1. Массовое грибковое поражение деревьев. Почему?
  2. Как приготовить раствор медного купороса повышенной вязкости
  3. Заключение

Массовое грибковое поражение деревьев. Почему?

Традиция применения известковой побелки с добавлением медного купороса от грибка на древесине, в нашем хозяйстве, остаётся неизменной уже пару десятков лет.

Поражения плодовых деревьев плесенью случались и раньше, но они были незначительными и проявлялись в конце плодоношения, на этапе, когда фруктами уже все насытились, а излишки, которые оставили загнивать на дереве, покрывались плесенью и мумифицировались.

В прошлом году картина была радикально противоположна, хотя обработка деревьев медным купоросом проводилась и осенью, и ранней весной.

Проблема коснулась не только моего сада. Деревья во всех дворах в округе стояли с поникшими потемневшими листьями.

Рекомендуем прочитать — «Коварная листовая плесень. Как не лишиться урожая?«

Картина поражения была следующая. Как только плод достигал зрелости, на его поверхности образовывался сначала белесый нарост. Вкус от этого не портился, поэтому те, кто не знаком с опасностью грибкового поражения, продолжали их употреблять, но не долго: день – два и плод скукоживался, покрывался наростами плесени и засыхал. Часть урожая, конечно, мы сохранили, наварив варенья и повидла в концентрированном сахарном сиропе. А свежее не ели. Опасались.

Как приготовить раствор медного купороса повышенной вязкости

Знаю, что сегодня на рынке есть готовые составы на основе измельчённого мела, медного купороса и клея ПВА, но я пока такими средствами не пользовалась.

Рецепт, которым я собираюсь с вами поделиться, выискала в сети Интернет и применила в саду, примерно 2 года назад. Побелка раствором медного купороса на вязкой извести меня очаровала. Всего одна обработка, а штамбы и скелетные ветки сверкают чуть голубоватой белизной, которую достаточно долго не смывают дожди.

Ингредиенты на 10 литров:

  • Свежегашеная известь – 2 кг.
  • Казеиновый клей (продают в строительных магазинах) — 100 г.
  • Медный купорос – 50 г.

Как разводить:

  1. В 1 литре горячей воды растворяю медный купорос.
  2. В ведро помещаю 2 кг. известковой пасты и развожу её до состояния густой сметаны.
  3. Вливаю раствор медного купороса и перемешиваю.

Как использовать:

Под деревом застилаю кусок брезента. Очищают ствол щеткой так, чтобы мусор и плесень сыпались на подстилку. Затем малярной щеткой белю дерево, захватывая скелетные ветки. Весеннюю обработку осуществляю ранней весной, как только подсохнет верхний слой почвы, чтобы грязь не месить. Осенью – после уборки опавших листьев.

Заключение

Не знаю, что я делаю неправильно? Почему результаты моих трудов поедает плесень? Может быть, нужно увеличивать количество медного купороса в растворе? Это вопросы, которые остаются открытыми. А что Вы об этом думаете, уважаемые читатели?

Средства от плесени

Оцените автора

( 3 оценки, среднее 5 из 5 )

Использование сульфата меди в птицеводстве

Использование сульфата меди в птицеводстве очень широко распространено. это первое, что используется в случае токсичности. Много раз вместо коррекции токсичности это может вызвать токсичность из-за высоких доз. Поэтому его химическое использование требует надлежащего изучения. Медь является важным микроэлементом, который требуется птице в очень меньших количествах. Согласно NRC рекомендуется 8 частей на миллион меди, в то время как в руководстве venkys указано 15 частей на миллион меди в рационах домашней птицы. Медь не является очень дорогим элементом, поэтому в кормах ее дефицита не наблюдается, поэтому любой сульфат меди, который мы используем в кормах или воде, имеет терапевтические/токсические последствия в зависимости от дозы.

Таким образом,

Сульфат меди имеет 2 применения , одно из которых предназначено для питания, а другое — для терапевтических целей.

Терапевтическое использование означает, что он используется для уничтожения бактерий, грибков, водорослей и других вредителей. Итак, наша главная цель — использовать сульфат меди против грибковых инфекций или токсичности в случае домашней птицы.

Как действует сульфат меди?

Ион меди является компонентом сульфата меди, имеющим токсикологические последствия. Ионы меди, по-видимому, связываются с функциональными группами белковых молекул в грибах и водорослях и вызывают денатурацию белков, вызывая повреждение клеток и их утечку. Вывод – СУЛЬФАТ МЕДИ РАБОТАЕТ ПРОТИВ ЖИВЫХ СУЩЕСТВ. СУЛЬФАТ МЕДИ ПРОТИВ ТОКСИЧНОСТИ ЭТО МИФ, НА СУЩЕСТВЕ СУЛЬФАТ МЕДИ САМ СТАНОВИТСЯ ТОКСИЧНЫМ ВО ВРЕМЯ ТОКСИЧНОСТИ. Большая часть токсичности у домашней птицы связана с плохим качеством кукурузы, в которой предварительно образуются токсины, такие как афлатоксины. Присутствуют ДОН или фумонизины. Токсины очень устойчивы к теплу или другим вещам, даже связывающие токсины могут связывать их в ограниченной концентрации. Сульфат меди не действует на уже образовавшиеся токсины.

Почему сульфат меди следует использовать с осторожностью при токсичности?

Токсичность в основном связана с микотоксинами, которые вырабатываются грибками, что связано с тем, что фермеры используют сульфат меди. Но медь создает в организме сильно окислительную среду, а токсины также производят свободные радикалы. Вместе они снижают иммунитет и повышают смертность.

безопасное использование сульфата меди
  • Сульфат меди не используется в птицеводстве, за исключением случаев видимых грибковых инфекций
  • Aspergillus fumigatus является основным этиологическим агентом
  • Аспергиллез обычно возникает в виде вспышек
  • Возраст – от 10 дней до 10 недель (цыплята <3 дней очень восприимчивы)
  • Высокий уровень антибиотиков, высокая влажность подстилки и тепла, плохая вентиляция, плохой иммунитет , грязный инкубаторий
  • Подобным образом другие грибы, такие как Candida, Mucor, Trichophyton, Torulopsis также поражают домашнюю птицу
  • Для использования в воде рекомендуется 1 г на 3-5 литров воды в течение 7-10 дней.
  • Не добавляйте никакие другие лекарства в корм.
  • Прекратите лечение антибиотиками. витамин Е, С и Se.
  • Иногда подкисленный сульфат меди также имеет хорошие эффекты
  • Для этого нужно добавить 1 г медного купороса и 3 мл уксуса на 3-5 литров воды.
  • В кормах можно использовать сульфат меди, если в него включены нерастительные вещества, такие как МБМ или рыбная мука.0026
  • Перед использованием связующего токсина см. его этикетку, поскольку большинство связующего токсина содержит медь, обычно в форме сульфата или оксина.
  • Хороший фунгистат можно приготовить из пропионата кальция и сульфата меди для промывания грибка после лечения антибиотиками.

Ali Veterinary Wisdom

Метки: аспергиллез, брудерная пневмония, цыплята, сульфат меди, грибковая инфекция, домашняя птица

Противогрибковая активность наночастиц серы и меди в отношении послеуборочных заболеваний огурцов, вызванных Botrytis cinerea и Sclerotinia sclerotiorum

1. Ислам Н., Миядзаки К. Нанотехнологическая инновационная система: понимание скрытой динамики траекторий синтеза нанонауки. Технол. Прогноз. соц. Чанг. 2009; 76: 128–140. doi: 10.1016/j.techfore.2008.03.021. [CrossRef] [Google Scholar]

2. Прасад Р. Синтез наночастиц серебра в фотосинтезирующих растениях. Дж. Наночастицы. 2014; 2014: 1–8. дои: 10.1155/2014/963961. [CrossRef] [Google Scholar]

3. Сингх С., Сингх Б.К., Ядав С.М., Гупта А.К. Применение нанотехнологий в сельском хозяйстве и их роль в борьбе с болезнями. Рез. Дж. Наноски. нанотехнологии. 2015;5:1–5. doi: 10.3923/rjnn.2015.1.5. [CrossRef] [Google Scholar]

4. Бхаттачарья А., Дурайсами П., Говиндараджан М., Бухру А.А., Прасад Р. Достижения и применение грибных нанобиотехнологий. Спрингер; Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США: 2016 г. Нанобиофунгициды: новая тенденция в борьбе с насекомыми-вредителями; стр. 307–319.. [Google Scholar]

5. Martinelli F., Scalenghe R., Davino S., Panno S., Scuderi G., Ruisi P. , Villa P., Stroppiana D., Boschetti M., Goulart L.R., et al. Передовые методы обнаружения болезней растений. Обзор. Агрон. Поддерживать. Дев. 2015; 35:1–25. doi: 10.1007/s13593-014-0246-1. [CrossRef] [Google Scholar]

6. Атик М., Наим И., Сахи С.Т., Раджпут Н.А., Хайдер Э., Усман М., Фатимаа К., Ариф Э., Кайюм А. Наночастицы: безопасный путь к грибковые заболевания. Арка фитопат. Завод Прот. 2020; 53: 781–792. doi: 10.1080/03235408.2020.1792599. [CrossRef] [Google Scholar]

7. Дик А.Дж., Элад Ю. Сравнение антагонистов Botrytis cinerea в тепличных огурцах и томатах в различных климатических условиях. Евро. Дж. Плант Патол. 1999; 105: 123–137. doi: 10.1023/A:1008778213278. [CrossRef] [Google Scholar]

8. Schwartz H.F., Singh S.P. Селекция фасоли обыкновенной на устойчивость к белой плесени: обзор. Растениеводство. 2013; 53:1832–1844. doi: 10.2135/cropsci2013.02.0081. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

9. Лян С., Роллинс Дж.А. Механизмы некротрофического патогенеза широкого круга хозяев у Sclerotinia sclerotiorum . Фитопатология. 2018;108:1128–1140. doi: 10.1094/PHYTO-06-18-0197-RVW. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Liu J., Zhang Y., Meng Q., Shi F., Ma L., Li Y. Физиологические и биохимические реакции листьев подсолнечника, зараженных Sclerotinia sclerotiorum . Физиол. Мол. Завод Патол. 2017; 100:41–48. doi: 10.1016/j.pmpp.2017.06.001. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

11. Хиллокс Р.Дж. Сельское хозяйство с меньшим количеством пестицидов: обзор пестицидов в ЕС и вытекающие из этого проблемы для сельского хозяйства Великобритании. Защита урожая 2012; 31:85–93. doi: 10.1016/j.cropro.2011.08.008. [CrossRef] [Google Scholar]

12. Краснов С., Зив С. Нехимические подходы к борьбе с послеуборочной серой гнилью болгарского перца. Агрономия. 2022;12:216. doi: 10.3390/агрономия12010216. [CrossRef] [Google Scholar]

13. Шмид Г. Кластеры и коллоиды: от теории к приложениям. Джон Уайли и сыновья; Хобокен, Нью-Джерси, США: 2008. стр. 1–385. [Google Академия]

14. Чаудхури Р.Г., Париа С. Синтез наночастиц серы в водных растворах поверхностно-активных веществ. J. Коллоидный интерфейс Sci. 2010; 343:439–446. doi: 10.1016/j.jcis.2009.12.004. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Варшней Р., Бхадаурия С., Гаур М.С., Пасрича Р. Характеристика наночастиц меди, синтезированных новым микробиологическим методом. ДЖОМ. 2010;62:102–104. doi: 10.1007/s11837-010-0171-y. [CrossRef] [Google Scholar]

16. Harne S., Sharma A., Dhaygude M., Joglekar S., Kodam K., Hudlikar M. Новый способ быстрого биосинтеза наночастиц меди с использованием водного экстракта 9Латекс 0020 Calotropis procera L. и их цитотоксичность в отношении опухолевых клеток. Коллоидный прибой. Б Биоинтерфейсы. 2012; 95: 284–288. doi: 10.1016/j.colsurfb.2012.03.005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Faúndez G., Troncoso M., Navarrete P., Figueroa G. Антимикробная активность медных поверхностей в отношении суспензий Salmonella enterica и Campylobacter jejuni . БМС микробиол. 2004; 4:1–7. дои: 10.1186/1471-2180-4-19. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Гарсия П.С., Риверо Р.М., Руис Дж.М., Ромеро Л. Роль фунгицидов в физиологии высших растений: влияние на защитные реакции. Бот. 2003; 69: 162–172. doi: 10.1663/0006-8101(2003)069[0162:TROFIT]2.0.CO;2. [CrossRef] [Google Scholar]

19. Старнер К. Отдел экологического мониторинга Департамента регулирования пестицидов 1001 I Street Sacramento, California 95812 Пересмотрено 29 июня 2009 г. [(по состоянию на 1 февраля 2022 г.)]. Доступно в Интернете: http://citeseerx.ist.psu.edu/viewdoc/download?doi=10.1.1.363.7331&rep=rep1&type=pdf

20. Де Оливейра-Фильо Э.К., Лопес Р.М., Паумгарттен Ф.Дж.Р. Сравнительное исследование восприимчивости пресноводных видов к пестицидам на основе меди. Хемосфера. 2004; 56: 369–374. doi: 10.1016/j.chemosphere.2004.04.026. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Мастин Б.Дж., Роджерс Дж.Х. Токсичность и биодоступность гербицидов меди (Cleargate, Cutrine-Plus и сульфат меди) для пресноводных животных.

Арка Окружающая среда. Контам. Токсикол. 2000; 39: 445–451. doi: 10.1007/s002440010126. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

22. Лю К.М., Ясунами Т., Куруда К., Окидо М. Получение наночастиц меди с аскорбиновой кислотой методом восстановления водного раствора. Транс. Цветные металлы. соц. Китай. 2012;22:2198–2203. doi: 10.1016/S1003-6326(11)61449-0. [CrossRef] [Google Scholar]

23. Абу Эльмаати Т., Эль-Нагаре К., Рауф С., Абдельфаттах К., Эль-Кади С., Абдельазиз Э. Одноэтапный экологический подход к функциональной печати и отделке текстиль с использованием серебряных и золотых НЧ. RSC Adv. 2018;8:25546–25557. дои: 10.1039/C8RA02573H. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Delcan J., Moyano C., Raposo R., Melgarejo P. Хранение Botrytis cinerea с использованием различных методов. Дж. Плант Патол. 2002; 84: 3–9. [Google Scholar]

25. Чой Ю.В., Хайд К.Д., Хо У.Х. Выделение одиночных спор грибов. Грибные водолазы. 1999; 3: 29–38.

[Google Scholar]

26. Барнетт Х.Л., Хантер Б.Б. Иллюстрированные роды несовершенных грибов. 4-е изд. АПС Пресс; Сент-Пол, Миннесота, США: 1999. с. 76. [Google Академия]

27. Ханлин Р.Т. Иллюстрированные роды аскомицетов, том. Я. Фитопато-лог. соц. 1999;64:65. [Google Scholar]

28. Сахаран Г.С., Мехта Н. Склеротиниозные болезни сельскохозяйственных культур: биология, экология и борьба с болезнями. Спрингер; Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США: 2008. стр. 1–417. [Google Scholar]

29. Хао Ю., Цао С., Ма С., Чжан З., Чжао Н., Али А., Хоу Т., Сян З., Чжуан Дж., Ву С. и др. . Потенциальные применения и противогрибковая активность инженерных наноматериалов против возбудителя серой гнили Botrytis cinerea на лепестках роз. Передний. Растениевод. 2017;8:1332. doi: 10.3389/fpls.2017.01332. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Абдель-Халим К.Ю., Эль-Ганам А.А. Противогрибковая активность некоторых металлических наночастиц против Sclerotinia sclerotiorum на растениях фасоли обыкновенной: акцент на биохимических изменениях и накоплении металлов. акад. Дж. Наука о жизни. 2019;5:93–106. doi: 10.32861/ajls.511.93.106. [CrossRef] [Google Scholar]

31. Мостафа Ю.С., Хашем М., Альшехри А.М., Аламри С., Эйд Э.М., Зиедан Э.Ш., Алрумман С.А. Эффективное лечение мучнистой росы огурца с помощью эфирных масел. Сельское хозяйство. 2021;11:1177. дои: 10.3390/сельское хозяйство11111177. [CrossRef] [Google Scholar]

32. Дэн Г.Ф., Линь С., Сюй С.Р., Гао Л.Л., Се Дж.Ф., Ли Х.Б. Антиоксидантная способность и общее содержание фенолов в 56 овощах. Дж. Функц. Еда. 2013;5:260–266. doi: 10.1016/j.jff.2012.10.015. [CrossRef] [Google Scholar]

33. Вальверде-Миранда Д., Диас-Перес М., Гомес-Галан М., Кальехон-Ферре А.Х. Общее количество растворимых сухих веществ и сухое вещество огурца как показатели срока годности. Послеуборочная биол. Технол. 2021;180:111603. doi: 10.1016/j.postharvbio.2021.111603. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

34. Мосманн Т. Экспресс-колориметрический анализ клеточного роста и выживания: применение для анализа пролиферации и цитотоксичности. Дж. Иммунол. Методы. 1983; 65: 55–63. doi: 10.1016/0022-1759(83)90303-4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Костат. Версия 6.311, Cohort Software 798 Lighthouse Ave., PMB 320 Monterery, CA, USA, 2005. [(по состоянию на 1 февраля 2022 г.)]. Доступно в Интернете: https://www.researchgate.net/publication/335839765_Efficiency_of_some_Natural_Plant_Extracts_and_Ferrous_Sulphate_in_Controlling_the_Land_Snail_Monacha_cartusiana_under_Laboratory_and_Field_Conditions_at_Sharkia_Governorate_AR_Egypt

36. Гомес К.А., Гомес А.А. Статистические методы сельскохозяйственных исследований. 2-е изд. Уайли; Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США: 1984. [Google Scholar]

37. Дункан Д.Б. Несколько диапазонов и несколько F-тестов. Биометрия. 1955; 11: 1–42. дои: 10.2307/3001478. [CrossRef] [Google Scholar]

38. Сулейман М., Аль-Масри М., Аль Али А., Ареф Д., Хусейн А., Саадеддин И., Варад И. Синтез наночастиц серы и их антибактериальная активность. Дж. Матер. Окружающая среда. науч. 2015; 6: 513–518. [Google Академия]

39. Раффи М., Мерван С., Бхатти Т.М., Ахтер Дж.И., Хамид А., Явар В. Исследования антибактериального поведения наночастиц меди в отношении Escherichia coli . Анна. микробиол. 2010;60:75–80. doi: 10.1007/s13213-010-0015-6. [CrossRef] [Google Scholar]

40. Камрани Х. Синтез и характеристика наночастиц меди бис-(ацетилацетонато)-медью (II) с использованием неионогенных поверхностно-активных веществ и влияние их структуры на размер и выход наночастиц. Открыть Дж. Неорг. не соответствует Матер. 2018; 8:11–21. doi: 10.4236/ojinm.2018.82002. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

41. Чоудхари С., Сарма Дж.В.Н., Панде С., Абабу-Жирар С., Тюрбан П., Лепин Б., Гангопадхьяй С. Механизм окисления тонких пленок меди: путь к образованию монооксидной фазы. АИП Пров. 2018;8:055114. doi: 10.1063/1.5028407. [CrossRef] [Google Scholar]

42. Colmenero F., Timón V. Изучение структурных, колебательных и термодинамических свойств натроксалатного минерала с использованием теории функционала плотности. J. Химия твердого тела. 2018; 263:131–140. doi: 10.1016/j.jssc.2018.04.022. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

43. Schoonbeek H.J., Jacquat-Bovet A.C., Mascher F., Métraux J.P. Бактерии, разлагающие оксалаты, могут защитить Arabidopsis thaliana и сельскохозяйственные культуры от Botrytis cinerea. Мол. Взаимодействие растений и микробов. 2007; 20:1535–1544. doi: 10.1094/MPMI-20-12-1535. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Cessna S.G., Sears V.E., Dickman M.B., Low P.S. Щавелевая кислота, фактор патогенности Sclerotinia sclerotiorum, подавляет окислительный взрыв растения-хозяина. Растительная клетка. 2000;12:2191–2199. doi: 10.1105/tpc.12.11.2191. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Массалимов И.А., Медведев Ю.А., Зайнитдинова Р.М., Муфазалова Н.А., Мустафин А.Г. Оценка противогрибковой активности микронизированной и наноразмерной элементарной серы. нанотехнологии. Наноски. 2012; 3:55–58. [Google Scholar]

46. Уда С.М. Противогрибковая активность наночастиц серебра и меди в отношении двух патогенов растений, Alternaria alternata и Botrytis cinerea . Рез. Дж. Микробиол. 2014;9: 34–42. doi: 10.3923/jm.2014.34.42. [CrossRef] [Google Scholar]

47. Чоудхури С.Р., Гош М., Мандал А., Чакраворти Д., Пал М., Прадхан С., Госвами А. Поверхностно-модифицированные наночастицы серы: эффективное противогрибковое средство против Aspergillus niger и Fusarium oxysporum . заявл. микробиол. Биотехнолог. 2011;90:733–743. doi: 10.1007/s00253-011-3142-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Млалила Н.Г., Свай Х.С., Хилонга А., Кадам Д.М. Антимикробная зависимость наночастиц серебра от полос поверхностного плазмонного резонанса против Escherichia coli. нанотехнологии. науч. заявл. 2017;10:1. doi: 10.2147/NSA.S123681. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Терефе Х., Фининса С., Сахиле С., Фантайе К.Т. Влияние температуры на рост и спороношение Botrytis fabae и реакции устойчивости конских бобов к патогену. Завод Патол. микробиол. 2015; 6:1–9. doi: 10.4172/2157-7471.1000285. [CrossRef] [Google Scholar]

50. Ahlem H., Mohammed E., Badoc A., Ahmed L. Влияние pH, температуры и активности воды на ингибирование Botrytis cinerea изолятами Bacillus amyloliquefaciens . фр. Дж. Биотехнология. 2012;11:2210–2217. [Google Академия]

51. Boscaiu M., Sánchez M., Bautista I., Donat P., Lidón A., Llinares J., Llul C., Mayoral O., Vicente O. Фенольные соединения как маркеры стресса у растений из местообитаний гипса. Бык. УАСВМ Хортик. 2010;67:44–49. [Google Scholar]

52. Hernández-Fuentes A.D., López-Vargas E.R., Pinedo-Espinoza J.M., Campos-Montiel R.G., Valdés-Reyna J., Juárez-Maldonado A. Послеуборочное поведение биологически активных соединений в плодах томатов, обработанных Cu наночастицы и стресс NaCl. заявл. науч. 2017;7:980. doi: 10.3390/app7100980. [CrossRef] [Google Scholar]

53. Петковсек М.М., Слатнар А., Стампар Ф., Веберик Р. Фенольные соединения в листьях яблони после заражения паршой яблони. биол. Растение. 2011;55:725–730. doi: 10.1007/s10535-011-0176-6. [CrossRef] [Google Scholar]

54. Русян Д., Веберич Р., Микулич-Петковшек М. Реакция фенольных соединений в винограде сорта Шардоне ( Vitis vinifera L.) на заражение фитоплазмами Буа нуар. Евро. Дж. Плант Патол. 2012;133:965–974. doi: 10.1007/s10658-012-9967-7. [CrossRef] [Google Scholar]

55. Мохаммади С., Аминифард М.Х. Противогрибковая активность трех эфирных масел in vitro и in vivo против серой гнили огурцов ( Cucumis sativus ) Asian J. Plant Sci. 2011; 10: 287–293. doi: 10.3923/ajps.2011.287.293. [CrossRef] [Google Scholar]

56. Эль Гилли М., Хамза А., Клеман С., Ибриз М., Айт Барка Э. Эффективность послеуборочной обработки хитозаном для борьбы с зеленой плесенью цитрусовых. Сельское хозяйство. 2016;6:12. дои: 10.3390/сельское хозяйство6020012. [CrossRef] [Google Scholar]

57. Хассани А., Фатхи З., Гостя Ю., Абдоллахи А.Л.И., Мешкаталсадат М.Х., Маранди Р.Дж. Оценка эфирных масел растений для борьбы с послеуборочной бурой и серой гнилью абрикоса. Дж. Пищевая безопасность. 2012; 32:94–101. doi: 10.1111/j.1745-4565.2011.00353.x. [CrossRef] [Google Scholar]

58. Сабела М.И., Маханя Т., Канчи С., Шахбааз М., Идресс Д., Бисетти К. Однореакторный биосинтез наночастиц серебра с использованием Iboza Riparia и Ilex Mitis для определения цитотоксичности у человека. клетки эмбриональной почки. Дж. Фотохим. Фотобиол. Б биол. 2018; 178: 560–567. doi: 10.1016/j.jphotobiol.2017.12.010. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

59. Фу П.П., Ся К., Хван Х.М., Рэй П.С., Ю Х. Механизмы нанотоксичности: образование активных форм кислорода. J. Пищевой анал с наркотиками. 2014;22:64–75. doi: 10.1016/j.jfda.2014.01.005. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Фирдхаус Дж., Лалита П. Апоптотическая эффективность биогенных наночастиц серебра в клеточных линиях рака молочной железы человека MCF-7. прог. Биоматер. 2015;4:113–121. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

61. Schneider T., Baldauf A.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

*